Obtención de compuestos fenólicos a partir de residuos de uva isabella (vitis labrusca)
Resumen
Los residuos de la agroindustria presentan un gran potencial como fuente de compuestos de valor agregado. El presente estudio evalúa la caracterización química de residuos generados en el cultivo (sarmientos) y en la producción (i.e. semillas, hollejos y escobajos) de pulpa de uva Isabella. La caracterización se realiza cuantificando los compuestos fenólicos totales y la actividad antioxidante. Los resultados mostraron que los escobajos y las semillas presentan mayor concentración de compuestos fenólicos totales (22,08 ± 0,20 y 10,62 ± 0,17 mg de equivalente de ácido gálico/g) y mayor actividad antioxidante (0,29 ± 0,01 y 0,63 ± 0,01), respectivamente. Como conclusión, los escobajos y las semillas tienen potencial como materia prima para la obtención de compuestos con actividad antioxidante que podrían ser empleados en la formulación de: cremas, alimentos funcionales y alimentos enriquecidos. Sin embargo, las bondades de los componentes con actividad antioxidante de las semillas son más conocidas y reconocidas que las de los escobajos. Por tanto, el reto para aprovechar el potencial de las semillas está enfocado en cómo realizar la extracción industrialmente. De otro lado, se necesitan más investigaciones para entender las bondades y aplicación de los compuestos fenólicos de los escobajos
Descargas
Lenguajes:
es;enAgencias de apoyo:
Universidad Nacional de Colombia, Instituto de Biotecnología y AgroindustriaReferencias bibliográficas
QUIDEAU, S., DEFFIEUX, D., DOUAT-CASASSUS C. and POUYSÉGU, L. Plant polyphenols: chemical properties, biological activities, and synthesis. Angewandte Chemie International Edition, 50(3), 2011, p. 586-621.
BAYDAR, N.G. and BAYDAR, H. Phenolic compounds, antiradical activity and antioxidant capacity of oil-bearing rose (Rosa damascena Mill.) extracts. Industrial Crops and Products, 41, 2013, p. 375-380.
ROUTRAY, W. and ORSAT, V. Preparative extraction and separation of phenolic compounds. Natural Products. 1ed. Berlin (Alemania): Springer, 2013, p. 2013-2045.
SILVA, L.M., FIGUEIREDO, E.A., RICARDO, N.M., VIEIRA, I.G., FIGUEIREDO, R.W., BRASIL, I.M. and GOMES, C.L. Quantification of bioactive compounds in pulps and by-products of tropical fruits from Brazil. Food Chemistry, 143, 2014, p. 398-404.
AZMIR, J., ZAIDUL, I.S.M., RAHMAN, M.M., SHARIF, K.M., MOHAMED, A., SAHENA, F., JAHURUL, M.H.A., GHAFOOR, K., NORULAINI, N.A.N. and OMAR, A.K.M. Techniques for extraction of bioactive compounds from plant materials: a review. Journal of Food Engineering, 117, 2013, p. 426-436.
AGRONET. Producción nacional por producto [Online]. 2013. Disponible: http://207.239.251.112/www/htm3b/ReportesAjax/parametros/reporte16_2011.aspx?cod=16. [Citado: 7 febrero de 2016].
DOSHI, P., ADSULE, P., BANERJEE, K. and OULKAR, D. Phenolic compounds, antioxidant activity and insulinotropic effect of extracts prepared from grape (Vitis vinifera L) by products. Journal of Food Science and Technology, 52(1), 2015, p. 181-190.
BRAHIM, M., GAMBIER, F. and BROSSE, N. Optimization of polyphenols extraction from grape residues in water medium. Industrial Crops and Products, 52, 2014, p. 18-22.
LÓPEZ DE LERMA, N., PEINADO, J. and PEINADO, R.A. In vitro and in vivo antioxidant activity of musts and skin extracts from off-vine dried Vitis vinifera cv. ‘‘tempranillo’’ grapes. Journal of Functional Foods, 5, 2013 p. 914-922.
VAID, M., SINGH, T., PRASAD, R., KAPPES, J.C. and KATIYAR, S.K. Therapeutic intervention of proanthocyanidins on the migration capacity of melanoma cells is mediated through PGE2 receptors and β-catenin signaling molecules. American Journal of Cancer Research, 15(5), 2015, p. 3325-3338.
CERÓN, I., HIGUITA, J.C. y CARDONA, C.A. Capacidad antioxidante y contenido fenólico total de tres frutas cultivadas en la región andina. Vector, 5, 2010, p. 17– 26.
DA PORTO, C., PORRETTO, E. and DECORTI, D. Comparison of ultrasound-assisted extraction with conventional extraction methods of oil and polyphenols from grape (Vitis vinifera L.) seeds. Ultrasonics Sonochemistry, 20, 2013, p. 1076-1080.
ROJAS, A.F., RUALES, A.V. y VELASCO, V. Características energéticas de combustibles densificados de residuos de uva isabella (Vitis labrusca L.). Mutis, 5(2), 2015 p. 5-15.
SPATAFORA, C., BARBAGALLO, E., AMICO, V. and TRINGALI, C. Grape stems from Sicilian Vitis vinifera cultivars as a source of polyphenol-enriched fractions with enhanced antioxidant activity. Food Science and Technology, 54, 2013, p. 542-548.
CETIN, E.S., ALTINOZ, D., TARCAN, E. and BAYDAR, N.G. Chemical composition of grape canes. Industrial Crops and Products, 34, 2011, p. 994-998.
ANASTASIADI, M., PRATSINIS, H., KLETSAS, D., SKALTSOUNIS, A.L. and HAROUTOUNIAN, S.A. Grape stem extracts: polyphenolic content and assessment of their in vitro antioxidant properties. Food Science and Technology, 48, 2012, p. 316-322.
DENG, Q., PENNER, M.H. and ZHAO, Y. Chemical composition of dietary fiber and polyphenols of five different varieties of wine grape pomace skins. Food Research International, 44, 2011 p. 2712-2720.
SANTOS, L.P., MORAIS, D.R., SOUZA, N.E., COTTICA, S.M., BOROSKI, M. and VISENTAINER, J.V. Phenolic compounds and fatty acids in different parts of Vitis labrusca and V. vinifera grapes. Food Research International, 44, 2011, p. 1414-1418.
REDDY, G.V.B., SEN, A.R., NAIR, P.N., REDDY, K.S., REDDY, K.K. and KONDAIAH, N. Effects of grape seed extract on the oxidative and microbial stability of restructured mutton slices. Meat Science, 95, 2013, p. 288-294.
NAIR, M.P., KANDASWAMI, C. and MAHAJAN, S. Grape seed extract proanthocyanidins down regulate HIV-1 entry coreceptors, CCR2b, CCR3 and CCR5 gene expression by normal peripheral blood mononuclear cells. Biology Research, 35(3–4), 2002, p. 421-431.
AKABERI, M. and HOSSEINZADEH, H. Grapes (Vitis vinifera) as a potencial candidate for the therapy of the metabolic syndrome. Phytotherapy Research, 30(4), 2016, p. 540-556.
SPIGNO, G., MAGGI, L., AMENDOLA, D., DRAGONI, M. and DE FAVERI, D.M. Influence of cultivar on the lignocellulosic fractionation of grape stalks. Industrial Crops and Products, 46, 2013, p. 283-289.
BARROS, A., GIRONÉS-VILAPLANA, A., TEIXEIRA, A., COLLADO-GONZÁLEZ, J., MORENO D.A., GIL-IZQUIERDO, A., ROSA, E. and DOMÍNGUEZ-PERLES, R. Evaluation of grape (Vitis vinifera L.) stems from Portuguese varieties as a resource of (poly)phenolic compounds: A comparative study. Food Research International, 65, 2014, p. 375-384.
RUALES-SALCEDO, A.V. Evaluación del potencial energético y bioactivo de los residuos generados por la producción y transformación de la uva [Tesis de Maestría en Ingeniería]. Manizales (Colombia): Universidad Nacional de Colombia, 2015, 117 p.
AMICO, V., BARRESI, V., CHILLEMI, R., CONDORELLI, D.F., SCIUTO, S., SPATAFORA, C. and TRINGALI, C. Bioassay-guided isolation of antiproliferative compounds from grape (Vitis vinifera) stems. Natural Product Communications, 4(1), 2009, p. 27-34.
SOUQUET, J.M., LABARBE, B., LE GUERNEVE, C., CHEYNIER, V. and MOUTOUNET, M. Phenolic composition of grape stems. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 48(4), 2000, p. 1076-1080.
PIZZI, A. Recent developments in eco-efficient bio-based adhesives for wood bonding: opportunities and issues. Journal of Adhesion Science and Technology, 20(8), 2006, p. 829-846.
DOMÍNGUEZ-PERLES R., TEIXEIRA A.I., ROSA, E. and BARROS A.I. Assessment of (poly)phenols in grape (Vitis vinifera L.) stems by using food/pharma industry compatible solvents and response surface methodology. Food Chemistry, 164, 2014, p. 339-346.
Español
Inglés
.png)
