Efecto de la adición de cepas probióticas sobre metabolitos sanguíneos en cerdos en crecimiento
Resumen
El destete es la fase más crítica del cerdo, produciendo trastornos intestinales y diarreas. Para prevenirlo, se han utilizado antibióticos promotores de crecimiento (APC), generando residuos medicamentosos en el producto final. Como alternativa, se utilizan bacterias probióticas que favorecen la síntesis proteica y el metabolismo lipídico. El objetivo fue identificar cambios en metabolitos plasmáticos en cerdos posdestete que consumieron diferentes cepas probióticas. 80 lechones (destetados a 21 días) consumieron dos dietas: dieta comercial con y sin la adición de antibiótico (con adición de probióticos L. casei, L. acidophilus o E. faecium) en el agua. Se tomaron muestras sanguíneas (días 15, 30 y 45 posdestete) para determinar cambios plasmáticos de metabolitos. Se observó un aumento (P<0,05) en niveles plasmáticos de Calcio, Fósforo, glucosa y Fosfatasa alcalina; además, disminuyeron los niveles de Creatinina, triglicéridos y ALT (alanino-transferasa) en animales que consumieron E. faecium, comparándolos con los que consumieron antibiótico. Los probióticos (especialmente E. faecium), pueden ser considerados como una alternativa al uso de APC en dietas de cerdos, pues mejoran el estado de órganos digestivos y actúan como promotores naturales del crecimiento ya que mejoran el estado metabólico del animal con cambios positivos en los niveles sanguíneos de Calcio, Fósforo y Glucosa.
Descargas
Lenguajes:
es;enReferencias bibliográficas
COLINA, J., RICO, D., ARAQUE, H., RUEDA, E., LEÓN, M., TOVAR, C. y ROSINI A. Hematología, metabolitos sanguíneos y peso de órganos de cerdos en crecimiento alimentados con Harina de Pijiguao (Bactris gasipaes H.B.K.) y Lisina. Revista Facultad de Ciencias Veterinarias, 51(1), 2010, p. 51-62.
BOUDRY, C., DEHOUX, J., PORTETELLE, D. and BULDGEN, A. Bovine colostrum as a natural growth promoter for newly weaned piglets: a review. Biotechnologie Agronomie Sociéte Environnement, 12(2), 2008, p. 157-170. 2008.
CAMPBELL, J., CRENSHAW, J. and POLO, J. The biological stress of early weaned piglets. Journal of Animal Science and Biotechnology, 4(1), 2013, p. 4-19.
SUGIHARTO, S., HEDEMANN, M. and LAURIDSEN, C. Plasma metabolomic profiles and immune responses of piglets after weaning and challenge with E. coli. Journal of Animal Science and Biotechnology, 5, 2014, p. 5-17.
RIEGER, J., JANCZYK, P., HÜNIGEN, H., NEUMANN, K. and PLENDL, J. Intraepithelial lymphocyte numbers and histomorphological parameters in the porcine gut after Enterococcus faecium NCIMB 10415 feeding in a Salmonella Typhimurium challenge. Veterinary Immunology and Immunopathology, 164, 2015, p. 40-50.
MISSOTTEN, J., MICHIELS, J. and DEGROOTE, J.D.S.S. Fermented liquid feed for pigs: an ancient technique for the future. Journal of Animal Science and Biotechnology, 6(1), 2015, p. 1-9.
WANG, X., YANG, F., LIU, C., ZHOU, H., WU, G., QIAO, S., LI, D. and WANG, J. Dietary supplementation with the probiotic Lactobacillus fermentum I5007 and the antibiotic Aureomycin differentially affects the small intestinal proteomes of weanling piglets. Jourbal of Nutrition, 142(1), 2012, p. 7-13.
PLAZA-DÍAZ, J., GOMEZ-LLORENTE, C., FONTANA, L. and GIL, A. Modulation of immunity and inflammatory gene expression in the gut, in inflammatory diseases of the gut and in the liver by probiotics. World Journal of Gastroenterology, 2014, 20, p. 15632-15649.
COUNCIL FOR INTERNATIONAL ORGANIZATIONS OF MEDICAL SCIENCES (CIOMS). International Guiding Principles for Biomedical Research Involving Animals. Geneva (Italy): 1985, 28 p.
NATIONAL RESEARCH COUNCIL (NRC). The Nutrient Requirements of Swine. 11th ed. Washington DC (United States of America): National Academy Press, 2012, 400 p.
Statistical Analysis Systems Institute (SAS). SAS/STAT Users Guide. Version 9.2th. Cary, NC (United States of America): SAS Institute Inc, 2007, p 121.
XIAO, Y., WU, X., SUN, M., YANG, L., HONG, H., CHEN, G. and YANG, M. Response to dietary L-glutamine supplementation in weaned piglets: a serum metabolomic comparison and hepatic metabolic regulation analysis. Journal of Animal Science, 2012, 90(12), p. 4421-4430.
PONNAMPALAM, E., LEWANDOWSKI, P., NESARSTNAM, K., DUNSHEA, R. and GILL, H. Differential effects of natural palm oil, chemically- and enzymatically-modified palm oil on weight gain, blood lipid metabolites and fat deposition in a pediatric pig model. Nutrition Journal, 2011, 10, p. 1-7.
LYE, H., KHOO, Y., KARIM, A., RUSUL, G. and LIONG, T. Growth properties and cholesterol removal ability of electroporated Lactobacillus acidophilus BT 1088. Journal of Microbiology and Biotechnology, 2012, 22(7), p. 981-989.
GHANEM, K., BADAWY, I. and ABDEL-SALAM, A. Influence of yoghurt and probiotic yoghurt on the absorption of calcium, magnesium, iron and bone mineralization in rats. Milchwissenschaft, 2004, 59, p. 472-475.
PARVANEH, K., JAMALUDDIN, R., KARIMI, G. and ERFANI, R. Effect of probiotics supplementation on bone mineral content and bone mass density. Scientific World Journal, 2014, p. 1-6.
FERNÁNDEZ-GARCÍA, M., RODRÍGUEZ-FELICES, Y., GALLARDO-ESCUDERO, A., MATA-SOTO, C., PLANELLS, E., LISBONA, F., ALFÉREZ, J. y LÓPEZ-ALIAGA, I. Estudio del metabolismo proteico en una población de jóvenes sanos: factores asociados. ARS Pharmaceutica, 2010, 51(3), p. 401-406.
GONZALEZ, J.D. Alanina Aminotransferasa en Sparus aurata: control de la expresión génica mediante RNAi y de la actividad enzimática por aminooxiacetato [Tesis Doctoral Biotecnología]. Barcelona (España). Universidad de Barcelona, Facultad de Farmacia, Departamento de Bioquímica, 2012, p 186.
Español
Inglés
.png)
